Электромагнитные отметчики бывают разных моделей (рис. 51), но работают на одном и том же принципе. Их основными деталями являются электромагнит, обмотка которого включается в электрическую цепь постоянного тока (аккумулятор 3—5 В), и якорь, снабженный записывающим рычажком. При пропускании тока якорь притягивается к электромагниту и опускает записывающий рычажок, который делает отметку на кимографе.

Соответственно используются и разные типы датчиков, т. е. первичных преобразователей (фото-, термо-, ме-ханоэлектрические и др.). Наиболее распространены в физиологии механоэлектрические датчики, преобразующие механические величины (давление, смещение) в электрические сигналы через пьезоэлектрический эффект, изменение индуктивности или емкости. Основу пьезоэлектрического датчика составляет кристалл (кварца, турмалина, сегнетовой соли или титаната бария), малейшая деформация которого ведет к возникновению разности потенциалов на его поверхности.

Эти приборы имеют по нескольку каналов, каждый из которых состоит из усилителя и регистратора соответствующих биопотенциалов. Биопотенциалы, отведенные с помощью макроэлектродов (ЭКГ, ЭЭГ, ЭМГ и др.), после усиления предусилителями типа УБП-03, «Сигнал-2» и других могут записываться и визуально наблюдаться и на регистраторах общего типа — самописцах РПЧ2-01, УСЧ8-03 и серийных осциллоокопах. Большинство задач физиологического практикума, связанных с использованием новых технических устройств, может быть выполнено при наличии в лаборатории таких приборов, как стимулятор ЭСЛ-2, самописец РПЧ2-01 или Н327, электронный измеритель давлений ЭИД-1 с тремя типами датчиков, осциллоскоп двухканальный для визуального наблюдения непрерывных процессов.

Цель опыта: 1) ознакомиться с методикой получения слюны в хроническом опыте у сельскохозяйственных животных, 2) изучить влияние разных кормов на спонтанное слюноотделение из околоушной слюнной железы жвачных. Подготовка опыта. Опыт проводится на 8—12-месячном теленке или взрослой овце с хронической фистулой околоушной слюнной железы. Проток gl. parotis у жвачных открывается в ротовую полость на уровне четвертого коренного зуба.

Регистрировать слюноотделение, величина которого снижается вскоре в 2—2,5 раза и остается на низком уровне до 45—60 мин. После окончания опыта животное напоить водой или обратом. Слюна животных имеет щелочную реакцию. Щелочность более выражена в слюне околоушных желез по сравнению со слизистыми. Щелочная реакция обусловлена наличием в слюне щелочных солей, главным образом бикарбонатов натрия и калия.

Амилаза расщепляет крахмал до дисахарида мальтозы; мальтаза, действуя на мальтозу, расщепляет ее до глюкозы. В слюне жвачных амилолитические ферменты отсутствуют, в слюне собаки и лошади встречаются в виде следов. Цель опыта: 1) доказать наличие амилолитических ферментов в слюне человека и свиньи, 2) установить, что переваривающее действие ферментов проявляется при оптимальных условиях среды — температуре 37—40° С и слабощелочной реакции (7,1—7,2).

В пробирках № 1, № 3, № 5, № 6 — расщепления крахмала не происходит (в заключении указать — почему). В пробирке № 7 иногда происходит частичное расщепление крахмала, чаще — не происходит, так как амилаза почти не переваривает сырой крахмал. Проба Троммера на восстановление окиси меди. К содержимому пробирки прилить половину объема 10%-ного раствора NaOH и по каплям 1%-ный раствор C11SO4 до ясно-синего окрашивания.

Для титрования приготовить бюретки, воронки, пипетки на 5 и 10 мл, стаканчики, марлевые фильтры, капельницы. Используемые индикаторы и реактивы: 1%-ный спиртовой раствор фенолфталеина, 0,5% -ный спиртовой раствор диметилами-доазобензола, 1%-ный водный раствор ализариносульфоновокисло-го натрия, 0,1 н. раствор NaOH. Ход опыта. Взять два пронумерованных химических стаканчика {№ 1 и № 2) и внести в каждый по 5 мл профильтрованного желудочного сока.

Определение активности пепсина по В. Н. Туголукову. Протео-л*1тическая активность вычисляется по специальной формуле путем сравнения величины осадка негидролизованного белка в опытном и контрольном образцах. Подготовка опыта; Для анализа готовят профильтрованной желудочный сок, химические и центрифужные пробирки, 2%-ный раствор сухой плазмы крови на 0,1 н. растворе НС1. 1 На занятиях удобно использовать термобаню электрическую ТБ-110.

Если анализ ведется при температуре 20—23° С, вводится поправочный коэффициент 1,2, при температуре 26—29° С — 0,8. 1 Эта единица соответствует 0,01 мг кристаллического пепсина. Фермент химозин (реннин) в большом количестве содержится в сычужном соке телят, поэтому его называют сычужным ферментом. Специфичность ферментативного действия химозина ограничена его коагулирующим, створаживающим влиянием на молоко.

Емкостный датчик II типа аппарата ЭИД-1 (стр. 84) коаксильным кабелем соединяют с высокочастотным выносным генератором аппарата ЭИД-1, а выход последнего подключают к электрокардиографу ЭКПСЧ-3 или других моделей (рис. 69). Включают приборы в сеть и дают им прогреться в течение 15—20 мин. Ход опыта. Подсоединить отводную трубку от баллона к штуцеру емкостного датчика II типа аппарата ЭИД-1. Проверить герметичность системы регистрации.

Возбуждение распространяется по преджелудкам в таком порядке: сетка->предверие рубца -> дорзальный мешок рубца ->ка-удодорзальный слепой выступ вентральный мешок рубца-^-кау-довентральный слепой выступ. Частота сокращений преджелудков зависит от характера корма, степени наполнения отделов, функционального состояния пищеварительного тракта. В норме у здоровых животных частота сокращений в 1 мин колеблется в пределах: рубца— 1—3, сетки — 0,5—2, книжки — 3—6.

К дну груши приклеивают пробку 4, на соске укрепляют резиновую трубку 5 с тройником 6. Трубку соединяют со шприцем Жанэ 7, на стержне которого закрепляют рычажок с плечиком 8. Шприц монтируют на штативе; систему перед началом опыта заполняют водой. Цель опыта: 1) ознакомиться с разными конструкциями руминографов, 2) записать и проанализировать зубцы руминограммы. Подготовка опыта. Запись лучше производить на взрослом крупном рогатом скоте непосредственно на скотном дворе или в манеже.

Отведение биопотенциалов разных отделов сложного желудка жвачных можно производить как с поверхности самих преджелудков (с помощью вживленных в серозномышечный слой электродов) так и с поверхности тела, без предварительной операционной подготовки животного. В последнем случае лучше использовать усовершенствованную модель прибора — ЭГС-4М. Подготовка опыта. Для опыта используют мелких жвачных (овцу, козу).

Записать электрогастрограмму при спокойном, по возможности, состоянии животного. Перенести активный электрод на область позади реберной дуги и записать аналогичным образом электрограмму рубца (рис. 74). Жвачка — это процесс отрыгивания, ослюнения, вторичного пережевывания и заглатывания пищевого кома. Жвачка состоит из отдельных жвачных периодов, возникающих через 40—70 мин после приема корма и длящихся от 30 до 60 мин.

Акт жвачки прекращается. В обычных условиях раздражение баро- и тензиорецепторов книжки и сычуга при их наполнении кормом тормозит сокращения преджелудков и прекращает отрыгивание. При необходимости можно снова вызвать жвачку путем раздражения сетки. Попытаться добиться того же эффекта помещением в сетку двухкилограммовой гири, завернутой во влажную гряпку. Примечание. 1. Во время жвачки у крупного рогатого скота учащения моторики не наблюдается; на руминограмме отмечаются три зубца, соответствующие отрыгиванию, основному и дополнительному сокращениям рубца.

77). Залить фильтрат маслом И, сдвинув на нужное расстояние пробку, закрыть ею пробирку. Поставить пробу в термостат на 24—-36 ч. В качестве контроля использовать нейлоновую нить такой же длины, помещенную в третью пробирку с фильтратом. По истечении указанного времени полоски и нити извлечь из инкубационных сосудов, промыть несколько раз теплой дистиллированной водой (60° С) и высушить до постоянного веса в термостате при 70—80° С1.

Подготовка опыта. В работе использовать панкреатический сок, полученный у теленка с фистулой поджелудочной железы (опыт 30), или ферментный препарат, приготовленный из поджелудочной железы забитого животного. Приборы и реактивы: термостат или водяная баня, штатив с пробирками, пипетки, реактив Люголя, бромная вода (4%-ный раствор брома в воде), спиртовой раствор фенолфталеина, 1%-ный крахмальный клейстер, 1%-ная взвесь сырого крахмала, 2%-ный водный раствор пептона, желчь, фибрин, молоко, растительное масло.

Все пробирки поставить в термостат (баню) при 39° С на 12---15 мин. Вынуть пробирки и добавить в каждую по 2 капли раствора Люголя (из третьей пробирки взять для анализа половину содержимого и добавить 1 каплю реактива). Убедиться в отсутствие крахмала в первой пробирке (нет синего окрашивания) и в, наличии его в пробирках № 2 и № 3. Остаток содержимого пробирки № 3 поставить в термостат еще на 30 мин.

Под оба отверстия выведенных на брюхо концов изолированной кишки подвязать на эластичных жгутах стеклянные воронки; к последним подвесить градуированные пробирки. Приготовить тонкий резиновый зонд с отверстиями в стенке для механического раздражения кишки. Ход опыта. Наблюдать за сокоотделением в покое в течение 30—45 мин. Убедиться, что у собаки сок не отделяется, если не происходит «голодной периодической деятельности» (стр.

Для получения больших количеств крови делают пункцию яремной вены (после разреза кожи и препаровки сосуда) или пункцию сердца. Иглу вкалывают у левого края грудины, в точке, где хорошо ощущается сердечный толчок. Направление укола — внутрь к средней линии, глубина прокола 1,5—2 см. Одновременно можно взять до 5—10 мл крови. Крысы и мыши. Для получения крови у крыс и мышей надсекают ухо или срезают кончик хвоста.

Образование кровяного сгустка и частичная ретракция, т. е. его стягивание и самопроизвольное отделение сыворотки, наступает у лошади через 1—3 ч, а полное отделение сгустка — через 12—18 ч. У крупного рогатого скота ретракция протекает значительно медленнее. Из пробирки с полной ретракцией сгустка слить или отсосать сыворотку и сравнить ее с плазмой. Сыворотка имеет желтовато-соломенный цвет и более прозрачна, чем плазма.

Приставшую к кончику смесителя кровь осторожно удалить ватным тампоном или фильтровальной бумагой. Держа капилляр под углом, опустить его в склянку с 3%-ным раствором NaCl (жидкостью Гайема) и насосать раствор до метки 101 (кровь при этом разводится в 200 раз). Зажав смеситель между большим и средним пальцами, встряхивать его в течение 2—3 мин Удалить первые 2—3 капли из капилляра на фильтровальную бумагу и заполнить счетную камеру, приложив смеситель с выступающей небольшой каплей к краю шлифованного стекла.

п.) устраняются при использовании пробирочного метода разведения крови. В пробирки Флоринского пипеткой или из бюретки наливают по 4,0 мл разбавителя для эритроцитов, а в вида-левские пробирки по 0,4 мл разбавителя для лейкоцитов. Кровь насасывают в капиллярную пипетку на 20 мм3 от гемометра (см. опыт 48) и, обтерев кончик капилляра сухой ваткой, выдувают Кровь в жидкость для эритроцитов. Капилляр несколько раз промывают той же жидкостью.

Насосать в пипетку гемометра 20 мм3 цельной или стабилизированной крови и внести ее в раствор (разведение 1. : 950). Не вынимая пипетки, промыть се несколько раз раствором. Тщательно перемешать содержимое, пробирки и наполнить им до метки кювету «Э» прибора. Поместить кювету в гнездо эритрогемометра; стрелка микроамперметра отклоняется влево. Вращением ручки отсчетного диска привести стрелку в нулевое положение.

Содержание гемоглобина в крови зависит от вида, возраста, пола и состояния здоровья животных. Поэтому определение гемоглобина является важной составной частью клинического анализа крови. Основным методом определения количества гемоглобина является колориметрический. Визуальная колориметрия осуществляется с помощью гемометра ГС-3, электрофотоколориметрия с помощью электрофотоколоримет-ра ФЭК-М, эритрогемометра или гемоглобинометра фотоэлектрического ГФ-2.

Затем пробу крови 0,02 мл смешивают с 4 мл 0,04%-ного раствора аммиака (разведение 1:200). Исходную пробу гемолизированной крови фотометрируют при зеленом светофильтре в кювете с толщиной слоя 10 мм. Затем готовят ряд Иногда имеется лишь одна шкала, градуированная в грамм-процентах. последующих разведений и фотометрируют. На основании полученных данных строят калибровочную кривую, а также таблицу оптических плотностей и соответствующих им количеств гемоглобина.

В каждую пробирку внести по 5 капель дефибринированной крови или взвеси эритроцитов и, зажав пробирки пальцем, перемешать содержимое. Через 5—10 мин наблюдать результаты. Обычно в первых трех пробирках гемолиза не происходит, в пробирке № 4 происходит частичный гемолиз (раствор приобретает желтую или слабо-розовую окраску, не прозрачен), в пробирках № 5—7 — полный гемолиз, i Отцентрифугировать содержимое каждой пробирки в течение 5 мин при 2000 об/мин и убедиться в наличии или отсутствии осадка эритроцитов.

Наличие или отсутствие резус-фактора определяют с помощью специальных стандартных сывороток (прилагаются к комплекту приборов «Резус-2»). 2. У домашних животных установлено большое количество антигенных факторов в эритроцитах и почти полное отсутствие или нерегулярное присутствие естественных антител в сыворотке. Поэтому группы крови животных определяют только эритроцитарными антигенами, присутствующими в разных сочетаниях и передающимися по наследству.

установить локализацию центров автоматии и последовательность распространения возбуждения по проводящей системе. Подготовка опыта. Предварительно ознакомить студентов на схеме и препарате с порядком подведения и затягивания лигатур на отделах сердца. Приготовить лягушек, препаровальный набор, пробковую пластинку, часовое стекло, нитки, пипетку, раствор Рингера. Ход опыта. Обездвижить лягушку, фиксировать ее на пластинке и вскрыть грудную полость, как это описано в опыте 56.

, 4) ручками 1, 2 установить стрелки приборов 3, 4 в нулевое положение, 5) с помощью регуляторов 15 отрегулировать напряжение так, чтобы при нажатии кнопки калибратора 18 писчики отклонялись на 1 см, что соответствует амплитуде 1 мв. Поставить животное в станок, выстричь шерсть на соответствующих участках конечностей и наложить электроды. Между кожей и электродами поместить прокладки из марли, смоченные раствором NaCl, или смазать кожу электродной пастой.

Подвести лигатуру под заднюю полую вену, надрезать ее, вставить в разрез вторую канюлю с изогнутым соском и закрепить ее лигатурой. Перерезать вену выше места перевязки. Приподнять сердце за канюли, наглухо перетянуть ниткой перемычку, образовавшуюся между сердцем и легкими, и перерезать ее ближе к легким. С помощью пипетки с" оттянутым концом и баллончиком промыть сердце раствором Рингера через венозную канюлю.

Цель опыта: испытать влияние на сердечную деятельность медиаторов нервного возбуждения — норадреналина и ацетилхоли-на, а также ионов Са2+ и К.+, определенное содержание и соотношение которых в окружающей среде необходимо для нормальной регуляции функции сердца. Подготовка опыта. Для опыта желательно использовать крупных лягушек. Рабочие места обеспечивают препаровальными наборами, универсальными штативами с рычажками Энгельмана, кимографами, канюлями Штрауба, пипетками глазными, раство Ход опыта.

ст., 3) постоянное насыщение перфузионного раствора кислородом. Цель опыта: продемонстрировать работу изолированного сердца кролика (кошки, крупной крысы) при подключении его к перфу-зионной системе. Подготовка опыта. Целесообразно использовать кролика после процедуры измерения кровяного давления в остром опыте (стр. 213). Готовят препаровальный набор, установку для перфузии сердца, кимограф с удлинителем, универсальный штатив с записывающим рычажком, шприц на 1,0 мл с иглой, раствор Рингера— Локка, адреналин 1 : 1000, ацетилхолин 1 : 10 000.

Для быстрого спуска перегретого раствора служит кран 7. Температура перфузата измеряется термометром 8. Сердце подвешивается на канюле 9, сосуд Мариот-та заполняется раствором Рингера — Локка (стр. 337). С помощью крючка и нитки желудочек соединяется с рычажком 10 для записи на кимографе 11. Ход опыта. Наркотизированного кролика (кошку, крысу) обескровить путем перерезки сонных артерий '. Вскрыть грудную клетку, отпрепаровать и перерезать брюшную аорту на расстоянии 8—10 см от сердца.

Один конец осциллометра соединен с П-образной стеклянной трубкой, а другой — с «резонатором осцилляции». Резонатор представляет собой баллончик 3—5 см с двумя отверстиями. Нижнее отверстие соединяется со всей системой, а верхнее — с одним коленом осциллометрической трубки. На свободный конец П-образной трубки надевается трубка длиной 50—60 см, которая соединяется с манжетой и баллоном Ричардсона. Для взрослого рогатого скота используют манжету шириной 9 см и длиной 20 см.

В качестве воспринимающей части пневмографа можно использовать манжету сфигмоманометра, гофрированные противогазные трубки, велосипедную камеру с патрубком или специально изготовленные резиновые манжеты, приспособленные к размерам животного. Манжеты фиксируют на грудной клетке животного и соединяют проводником либо с капсулой Марея, либо с емкостным датчиком. Ход опыта. 1. Две герметически закрытые гофрированные трубки, соединенные тройником, укрепить с помощью тесемок по обе стороны грудной клетки лошади или теленкаС помощью резиновой трубки воспринимающую часть пневмографа присоединить к капсуле Марея,и записать дыхательные движения животного на закопченном барабане кимографа.

На величину ежедневной осадки больше влияет количество ежедневно закладываемого корма, чем общая высота кормового монолита. Величина осадки изменяется от 50—60 см в день до 100—130 см в конце загрузки. Чтобы предотвратить обру-шеНие или искривление центрального сбросного канала, трос подвески шахтообразователя следует отпускать в конце смены на 60 см. После окончания загрузки в течение 4—6 недель уровень корма в башне уменьшается на 10—15%.

Шнеки представляют собой трубчатый вал с приваренными витками и лопатками, к виткам крепятся ножи, на внешнем конце шнека установлена пристенная фреза. Задний шнек от переднего отличается отсутствием витков противоположного направления. Момент двигателя мощностью 17 кВт передается через клиноременную передачу на вал метателя и на привод червячного редуктора. Редуктор двухступенчатый, червячный, две первые ступени служат для привода шнеков, вторая — для привода ведущего колеса.

Кормоцех представляет собой производственный объект животноводческой фермы, предназначенный для приготовления влажных кормовых смесей в требуемом количестве и в соответствии с зоотехническими требованиями и циклом производства. , Опыт многих колхозов и совхозов, а также результаты научных исследований подтверждают, что для разного поголовья животных необходимы три типа кормоцехов: с полным циклом производства —- для ферм с поголовьем свыше 600 коров или 2000 голов молодняка крупного рогатого скота; с сокращенным циклом производства — для ферм с поголовьем 300—500 коров или 1000—2000 голов молодняка крупного рогатого скота; с частичным циклом производства (простейшие кормоцехи или кормокухни) — для ферм с поголовьем до 200 коров.

Каркас ящика сварен из уголка 45 X 45 мм. Сзади в ящике устанавливают створчатую дверь, а спереди —загрузочный люк (600 X 600 мм). Верхняя часть шцика съемная, закрепляемая на болтах М14. На крышке делают два смотровых люка размером 500 X 500 мм. Установка загружается соломой через передний люк от измельчителя ФН-1,2 или ИГК-ЗОБ. После загрузки закрывают все люки и в установку подают раствор. Солому смачивают водой и раствором карбамида в течение 5 мин.

Кормоцехи для кальцинирования соломы. В последнее время на животноводческих фермах нашей страны широкое распространение получили кормокухни с механизированными агрегатами, в основу работы которых положен принцип работы бетономешалок (табл. 111-2). Такие агрегаты действуют в Увельском совхозе Челябинской области,, в кблхозе имени Кирова Кинельского района Куйбышевской области, в совхозе «Стризневский» Вологодской области и многих других.

Солома скармливается крупному рогатому скоту в запаренном виде отдельно или в смеси с корнеплодами и концентрированными кормами. За смену в кормоцехе пятью рабочими кальцинируется до 5 т сухой соломы или готовится 50 т кормосмеси. Стоимость оборудования 10,86 тыс. руб. Кормоцех производительностью 20 т/смену (с оборудованием для кальцинирования соломы) разработан Тюменским филиалом Кургансельхозтехпроекта для .

Установленное в кормоцехе оборудование позволяет выполнять следующие операции: приготовлять и подавать 3%-ное известковое молоко вместе с мочевиной, каустиком и солью в запарник с предварительно измельченной соломой; принимать и включать силос в кормовую смесь; принимать и дозировать готовые концентрированные корма; смешивать компоненты рациона и выгружать их в кормо-раздающие устройства. Технологический процесс в кормоцехе протекает следующим образом.

Унификация позволила сократить номенклатуру кормоприготовительных машин, снизить себестоимость продукции и повысить производительность труда. Кормоцех колхоза имени Ленина Липецкого района Липецкой области. В репродуктор ном отделении свиноводческого комплекса, где размещаются 960 свиноматок с поросятами-сосунами, 703 холостых и супоросных свиноматки, 1108 голов ремонтного молодняка, 85 хряков-производителей, 1342 поросенка-отъемыша, оборудован кормоцех, разработанный по индивидуальному проекту Липецколхоз-проекта.

В цехе предусмотрены три технологические линии: подготовки измельченной соломы, переработки и подготовки к скармливанию концентратов, приготовления силоса и других компонентов рациона (рис. Ш-13). Предварительно измельченная солома подвозится кормораздатчиком КТУ-10 к кормоцеху и выгружается в бункер-накопитель с весоизмерительным устройством. Затем транспортером и шнеком солома распределяется по смесителям, где кальцинируется известковым раствором и пропаривается.

Готовую массу транспортером загружают в смесители С-12. Сюда же подают 0,1—0,15%-ный раствор соляной или 0,01%-ный серной кислоты. Всю массу перемешивают, запаривают и гидролизуют. Перед выдачей гидролизную солому сдабривают жидкими дрожжами, корнеплодами. Линия приготовления влажных и жидких кормов включает два смесителя С-12; варочные котлы ВКС-ЗМ, емкость для обрата РВМЦ-2, механизмы загрузки и выгрузки.

Агрегаты для термохимической обработки соломы изготавливают диаметром до 2—3 м. Выбор схем технологических линий кормоцеха. В зависимости от принятой предварительной подготовки кормов определяют соответствующую технологическую схему и комплект оборудования и машин в кормоцехе. На рисунке III-15 приводятся основные принципиальные технологические схемы предварительной переработки грубых и сочных кормов.

В этом случае линия комплектуется грейферным погрузчиком ПЭ-0,8, тракторным прицепом .и бункером-накопителем емкостью 10—15 м3. Нетрудно составить поточные линии и для переработки корнеклубнеплодов (варианты д и е). Вымытые и измельченные корнеплоды после мойки-измельчителя ИКС-5.0М или ИКМ-5 подаются или непосредственно в смеситель-запарник 10, или в бункер-дозатор 15 (например, типа бункера от КРС-1) и далее в смеситель-дробилку.

Эксплуатация машин с изношенными, молотками и ножами приводит к ухудшению качества измельчения грубых кормов, снижению производительности и увеличению расхода энергии. Кроме того, изношенные рабочие органы могут быть причиной поломок. Машины для измельчения сочных кормов. В зависимости от вида и состояния сочные корма в кормоцехе подвергаются различным технологическим операциям: зеленые корма и силос — измельчению, транспортированию и смешиванию; корнеклубнеплоды — мойке, измельчению, транспортированию, смешиванию.