Для крепления исследуемых препаратов и регистрирующих приборов с помощью винтовых зажимов можно использовать также простой металлический штатив, представляющий собой круглый стержень, укрепленный на тяжелом основании. На рис, 49 изображены некоторые стандартные приспособления общего типа, монтируемые на универсальном штативе. Отметчики времени. Установки для регистрации физиологических функций снабжаются отметчиками времени, которые подразделяются на механические и электрические.

Благодаря этому стала возможной электрическая регистрация таких показателей, как артериальное давление, кровенаполнение органов, сокращение мышц, дыхание, насыщение крови кислородом и др. Простейший (контактный) тип непосредственного преобразования физиологического эффекта в электрический нашел применение в опытах с графической регистрацией секреторной деятельности тех или иных органов (слюнных желез, желудка, почек, молочной железы).

Датчики состоят из катушки с большим числом витков и легкоподвижной штанги с якорем. Приложение механической силы к штанге вызывает перемещение якоря относительно катушки, включенной в цепь переменного тока. Это вызывает 1 Физиологические методы в клинической практике. Под ред. Бирюкова. Изд. 2. М., 1966; БредикисЮ. Ю. Очерки клинической электроники. М., 1974. изменение ее индуктивности, пропорциональное величине движения.

Однако неудобством записи является необходимость использования фотопленки, требующей последующей специальной обработки. В этом смысле более удобны приборы с непосредственной чернильной записью, в которых использованы мощные перьевые гальванометры. Они нашли применение в качестве выходных пишущих устройств в чернильнопишущих электрокардиографах, элек-трогастрографах, электроэнцефалографах, а также в приборах общего назначения — чернильнопишущих регистраторах.

При отведении постоянных или медленно меняющихся потенциалов применяют неполяризующиеся электроды (стр. 68). На поверхность электродов наносят электропроводящую пасту. 1 Векторэлектрокардиоскоп в сочетании с усилителем может быть использован на занятиях как универсальный электронный осциллограф. Усилители. Для регистрации собственной электрической активности объектов, которая характеризуется очень малыми величинами (мкА, мкВ) используются усилители с большим коэффициентом усиления (несколько миллионов).

Животное с фистулой желудка может быть использовано для получения и исследования желудочного содержимого, записи моторики желудка, получения чистого желудочного сока (в сочетании с эзофаготомией). Сущность операции по Басову сводится к извлечению желудка, наложению кисетного шва в фундальной области и введению после разреза стенки фистульной трубки в полость желудка. Цель опыта: ознакомиться с основными хирургическими приемами при подготовке животных к хроническим экспериментам.

После закрытия брюшной раны завязывают поддерживающие швы, подложив под них марлевые тампоны. На фистульную трубку навинчивают наружный диск. Если поддерживающие швы не накладывались, соприкосновение стенок желудка и брюшной полости достигают обматыванием фистульной Поддерживающие швы снимают через сутки, кожные швы — на 7—8-е сутки после операции. В принципе аналогичным образом накладывают басовские фистулы на желудок у свиней, кроликов и рыб, зоб и железистый желудок у птиц, сычуг у жвачных.

лигатуры, концы которых выводят наружу сквозь толщу брюшной стенки. В месте выведения фистульной трубки края кожи вырезают по диаметру трубки. Рану зашивают двухэтажным швом. Для первого этажа пользуются непрерывным кетгутным швом, которым захватывают брюшину и все слои, включая внутреннюю косую мышцу. Вторым узловатым швом из шелка сшивают кожу с подлежащими слоями, включая наружную косую мышцу живота !.

Последнюю соединяют резиновой трубкой с воронкой. С помощью этого приспособления промывают желудок теплой водой 30—35° С до тех пор, пока из желудка в подставленный таз не будет выливаться вода без примесей пищи. Для получения сока подготовить вареное мясо (мясной фарш), стеклянную воронку, мерный цилиндр, лакмусовую бумажку или индикатор (конго красный). Ход опыта. Опыт начать через 10 мин после промывания желудка.

Желудочек по способу Р. Гейденгайна (1878) образуется из фундальной части желудка, сохранившей с большим желудком только общую сосудистую связь (рис. 67,Я). На собаке с таким желудочком можно наблюдать только нейрохимическую (вторую) фазу желудочного сокоотделения, так как связи малого желудочка с центральной нервной системой нарушаются. Желудочек по способу И. П. Павлова (1894) выкраивается таким образом, что он сохраняет вегетативные нервные связи (рис.

Далее количество выделившегося сока измерять каждые 15 мин в течение 1 —1,5 ч. Сокоотделение из павловского желудочка начинается через несколько минут после кормления и быстро нарастает, достигая максимума через 45—50 мин. Сокоотделение из изолированного гейденгайновского желудочка начинается только через 30— 45 мин после приема пищи и продолжается в течение нескольких часов. По истечении часа опыта ввести собаке с изолированным павловским желудочком подкожно хлористоводородный гистамин в дозе 0,04 мг/кг в 0,1%-ном растворе.

К фистульной трубке подвесить мерную колбочку. Собирать сок из фистулы желудочка в течение 20—30 мин. Измерить его количество и убедиться в кислой реакции. Ход опыта. Скормить свинье 1 кг вареного картофеля или 1 кг измельченной сахарной свеклы. Наблюдать за секрецией сока в течение 1—1,5 ч, собирая его порциями по 20-минутным интервалам. Эти корма вызывают усиление сокоотделения, которое начинается через 15—20 мин и достигает максимума в пределах первого часа после начала кормления.

Цель опыта: 1) освоить методику носо-пищеводного зондирования у лошадей, 2) получить желудочный сок или желудочное содержимое для анализа. Подготовка опыта. Отобранную для исследования здоровую лошадь (спокойную и приученную к зондированию) выдерживают в течение 13—14 ч на голодной диете; воду прекращают давать за 4—5 ч. При исследовании животное ставят в станок. Для взятия желудочного содержимого используют носо-пище-водный зонд из толстой эластичной резины (длина— 160—180 мм, наружный диаметр 18—20 мм), бутыль и аппараты, создающие разряжение — насос Комовского, гидропульт или шприц Жанэ.

раствором NaOH, в пробирку № 4— 3 мл предварительно прокипяченного сока, в пробирку № 5 — 3 мл 0,1 н. НС1. Все пробирки, кроме второй, поставить в водяную баню или термостат при 38° С на 25—30 мин Пробирку № 2 поставить в холодную воду или в нижнее отделение холодильника на то же время. Извлечь пробирки и зарегистрировать результаты. Растворение йолокон фибрина в результате протеолитического расщепления происходит только в пробирке № 1.

Это явление получило название голодной периодической деятельности желудка. Через 20—30 мин после приема пищи начинается регулярная сократительная деятельность желудка, особенно его пилорической части, которая проявляется в виде периодических перистальтических волн. Эти сокращения способствуют переходу отдельных порций содержимого в кишечник и перемешиванию находящейся в желудке пищи с изливающимся соком.

Голодная периодика проявляется в виде серии (15—20) сокращений с очень небольшими интервалами. Если в течение 30 мин голодная периодика не проявляется, ввести собаке под кожу 1 мл 0,01%-ного раствора карбохолина (вещество, стимулирующее хо-линреактивные структуры). Через несколько минут тонус гладкой мускулатуры повышается, проявляются сокращения желудка и усиливается сокоотделение. Эффект продолжается более часа.

Одновременно с помощью поплавка можно записать кривые сокращений на. закопченном кимографе. Кривая имеет регулярный характер с дикротической волной на подъеме, что отражает двухфазный характер сокращений мышечного желудка. Примечание. Если на фистульной птице не удается измерить силу сокращений мышечного желудка, то это можно сделать в остром опыте на наркотизированной птице. После вскрытия брюшной полости и удаления части грудины отыскивают нижний отдел пищевода, разрезают его стенку и вводят в мышечный желудок металлическую или резиновую трубку с баллончиком.

• Заземляют аппарат и включают его в сеть. Заполняют чернилами чернилоприемник. Ход опыта. Присоединить электроды к кабелю пациента в соответствии с окраской штеккеров (красный — в гнездо дифферентно-го электрода). Активный металлический электрод укрепить с помощью тесьмы или резинового бинта в указанной выше точке для отведения биопотенциалов сычуга; индифферентный — в области крупа или бедра (униполярное отведение).

При введении в рубец этот объект либо укрепляют на пластиковых палочках, либо помещают в специальные капсулы с отверстиями (проницаемые мешочки). В опытах in vitro клетчатку помещают непосредственно в инкубационный сосуд (пробирку). По разнице веса клетчатки до и после инкубации определяют степень ее переваривания. Цель опыта. Ознакомиться с разными способами определения переваримости клетчатки в опытах in vitro.

79), который нетрудно изготовить в любой лаборатории Прибор изготавливается из плексигласового цилиндра / длиной 30 см с внутренним диаметром 7,5 см и наружным — 8,9 см (толщина стенок 0,7 см). На начальный участок цилиндра, снабженный резьбой, навинчивают сплошную головку из плексигласа. 2. В последней имеется отверстие 3 для провода, идущего к источнику освещения, и для крепления металлической стойки 4 осветителя 7.

Для устранения отражения света полированной поверхностью плексигласового цилиндра она на всем протяжении (кроме области наблюдения) покрывается краской 10. Цель опыта: 1) осмотр внутренней поверхности мешков и слепых выступов рубца, 2) наблюдение за сокращением разных отделов рубца. Подготовка опыта. Опыт желательно проводить на фистульной овце с освобожденными от содержимого преджелудками (см. опыт 29).

80,Л). Проходимость кишечника восстанавливают наложением бокового соустья. В аборальную часть двенадцатиперстной кишки также вставляют фистульную трубку (рис. 80,Б). Снаружи обе трубки соединяют с помощью резинового «мостика» (рис. 80,5). Эта операция позволяет получать желудочный сок во время опыта и направлять его в просвет кишечника в промежутке между опытамиПри наложении панкреатической фистулы у овец дополнительно перевязывают желчный проток и вставляют фистульную трубку в желчный пузырь.

В пробирке с водой жир разбивается на крупные капли, образующие на поверхности воды сплошной слой. Вода не является детергентом и не эмульгирует жиры. 3. В две пробирки вставить стеклянные воронки с бумажными фильтрами. Один фильтр смочить водой, другой — желчью. Налить в каждую воронку по 5—10 мл растительного масла. Через 45 мин проверить результаты. Через фильтр, смоченный желчью, масло профильтровывается, через фильтр, смоченный водой,— нет.

Приборы и реактивы: термостат (водяная баня), штатив с пробирками, пипетки, 3%-ный раствор пептона1, 1%-ный крахмальный клейстер, 5%-ная сахароза, 10%-ный раствор NaOH, 1%-ный раствор CuS04, кусочки фибрина и отмытой кинопленки. Ход опыта, 1. Занумеровать 4 пробирки и налить в каждую по 3 мл кишечного сока или экстракта слизистой. Содержимое пробирки № 2 прокипятить и остудить. В пробирки № 1 и № 2 добавить по 3 мл 3%-ного раствора пептона, в пробирку № 3 — кусочек фибрина и в пробирку № 4 — кусочек отмытой экспонированной кинопленки.

Подготовка опыта. Кролика (петуха), подвергнутого общему наркозу, фиксируют на операционном столике в спинном положении. Вскрыв брюшную полость, извлекают тощую кишку. Изолируют отрезок длиной 15— 20 см и в оба конца вставляют плексигласовые фистульные трубки диаметром 0,5—1,0 см (рис. 83,/). Концы кишки вокруг трубок затягивают лигатурами 2. На фистульные трубки одевают резиновые трубки, одну из которых -3 перекрывают зажимом 4, а другую 5 соединяют с градуированной бюреткой 6.

К ней относят костный мозг, печень, селезенку и лимфатические узлы. Для взятия крови у животных производят обработку операционного поля (выстригание или выбривание волосяного покрова, протирание кожи спиртом и эфиром), а затем надрезают (прокалывают) кровеносный сосуд или вводят в него иглу определенной формы и диаметра, предварительно подвергнутую стерилизации (рис. 84). Принудительной фиксации животных при взятии крови следует, по-возможности, избегать.

Выступающую кровь собирают описанным выше способом. У кур, гусей, индеек можно брать одновременно до 10—15 мл, у голубей — 1 —1,5 мл крови. При необходимости получить у кур артериальную кровь прибегают к пункции сонной артерии (после ее обнажения у наркотизированной птицы) или к пункции левого желудочка сердца. Прокол делают слева в V-образной вырезке грудной кости с направлением иглы к плечевому суставу противоположной стороны (у кур) или под углом 45° к стенке грудной клетки, вперед (у цыплят).

Одним из естественных антикоагулянтов является полисахарид гепарин, содержащийся почти во. всех тканях организма. Его используют в количестве 100 ед на 1 мл крови (примерно 2 капли неразведенного гепарина на 10 мл крови). Ход опыта. 1. В пробирку и стеклянный цилиндр о антикоагулянтом выпустить по 10 мл крови из яремной вены животного. Закрыв сосуд пальцем или пробкой, несколько раз перевернуть его для перемешивания крови.

Фибриноген, выпадающий в осадок в виде волокнистых нитей фибрина, оседает на шариках1. Профильтровать содержимое колбы через 2 слоя марли. Фильтрат представляет собой дефибринирован-ную кровь, содержащую сыворотку и форменные элементы. Использовать дефибринированную кровь для получения сыворотки (п. 3). 5. Осевшие на шариках (метелке) нити фибрина отмыть от форменных элементов теплой водой. Он имеет вид белого волокнистого вещества.

Поместить обе пробирки в горизонтальную центрифугу и центрифугировать при 4000 об/мин в течение 15 мин. Определить показатель гематокрита (опыт 41). Взять пробу окрашенной плазмы (1 мл) и колориметрировать ее на фотоэлектроколориметре ФЭК-Н-57 или спектрофотометре (при светофильтре с максимумом поглощения 614 ммк), сравнивая ее с образцом неокрашенной плазмы. С помощью составленной ранее калибровочной кривой для данного рабочего раствора краски по экстинкции окрашенной плазмы найти содержание краски в 1 мл исследуемой плазмы.

Из этих буферных систем главная часть бикарбонатного буфера, протеиновый и часть фосфатного находятся в плазме, а гемоглобиновый и другая часть фосфатного — в эритроцитах. Различают щелочной буфер крови (т. е. ее" способность связывать кислоты) и кислотный буфер (т. е. ее способность связывать щелочи). Точной мерой буферной емкости - крови является количество грамм-эквивалентов сильной щелочи или сильной кислоты, которое нужно прилить к 10 мл крови, чтобы сдвинуть ее рН на единицу (Ван-Сляйк).

Следовательно, щелочной буфер сыворотки крови в несколько раз больше кислотного буфера. Примечание. Тот же опыт можно провести в виде демонстрации по Ван-Сляйку, добавляя к 10 мл сыворотки по каплям кислоту или щелочь до смещения величины рН на единицу. Контроль за рН осуществляют потенциометриче-ски. Количество кислоты или щелочи выражают в грамм-эквивалентах. Организм особенно хорошо защищен от сдвига реакции в кислую сторону, так как в процессе обмена образуются в основном кислоты.

94, В, Г). В ампуле помещена стеклянная бусинка (красная или серая) для перемешивания крови. На капилляре имеются метки 0,5; 1,0; 101 (в смесителях для эритроцитов) и 0,5; 1,0; 11 (в смесителях для лейкоцитов). Таким образом емкость ампулы в 100 или, соответственно, в 10 раз больше емкости капилляра. Камера Горяева (рис. 94,Л) состоит из толстого стеклянного бруска с желобками, образующими три поперечно расположенные узкие площадки.

Если предотвратить кровь от свертывания и оставить ее в вертикальном сосуде, эритроциты в силу тяжести постепенно оседают и над ними остается желтоватая жидкость — плазма. Эритроциты имеют одноименный электрический заряд, вслед-ствии чего они отталкиваются друг от друга. Если этот заряд уменьшается, электростатическая сила их взаимного отталкивания исчезает и, соответственно, увеличивается способность к склеиванию и оседанию.

Каждому капилляру соответствует порядковый номер на штативе. Капилляры Панченкова — это пипетки с делениями от 0 (верхняя метка) до 100. На уровне деления 50 обозначена буква Р (реактив), на уровне отметки 0 — буква К (кровь). Для установки пипеток Панченкова могут быть использованы и другие модели штативов (рис. 102). Аппарат Вестергрена отличается от описанного тем, что его пипетки имеют больший размер (длина 30 см, диаметр 2,5 мм, деления от 0 до 100).

109,/), затянув ее кисетным швом. В аорту ввязать такую же трубку 2, свободный конец ее должен находиться ниже верхушки сердца. Удалить предсердия. Желудочки укрепить с помощью кольца 5 и зажимов, в штативе 4. Трубку 1 через резиновый шланг соединить с водопроводным краном. Под отводящую трубку 2 подставить сосуд. Открыть кран, отрегулировать медленный ток воды. Вода заполняет левый желудочек, поднимает митральный клапан 3 и переходит в аорту (в сторону удаленного предсердия вода не проходит).

Электрокардиограф ЭКПСЧ-3 (рис. 116) предназначен для записи биопотенциалов сердца при одновременной регистрации двух отведений. Принцип действия прибора основан на том, что электроды, наложенные на тело животного, с помощью кабеля соединяются с переключателем отведений, который дает возможность подвести напряжение с любой пары электродов к входу трех- или четырех -каскадного усилителя. Усиленное напряжение регистрируется чернильнопишущим устройством с записью на бумажной ленте шириной 70 мм при скорости движения 25, 50 и 100 мм/с1.

Изолированное сердце с помощью канюли и резиновых трубок подсоединяется к этим трубкам. Отток жидкости и приток ее к сердцу регулируются с помощью кранов 6, 7. Ход опыта. Обездвижить лягушку бескровным способом, фиксировать ее на пробковой пластинке и обнажить сердце (см. опыт 56). Перевязать и перерезать уздечку. Подвести по одной лигатуре под правую и левую дуги аорты. Перевязать левую ветвь аорты возможно дальше от сердца и захватить лигатуру пинцетом Пеана.

Цель опыта: показать значение эластичности сосудистой стенки для создания непрерывного тока жидкости в сосудах. Подготовка опыта. Демонстрация проводится на установках-моделях, изображенных на рис. 124, А, Б. Модель А (по А. Н. Кабанову) состоит из наполненной водой бутыли / с тубусом 2, которая посредством отводной трубки и тройника 4 соединена с двумя длинными трубками — стеклянной 5 и резиновой 6.

В артериальной системе высота кровяного давления падает от центра к периферии, поскольку сопротивление току крови возрастает. Артериальное давление меняется в зависимости от фазы сердечного цикла, в связи с чем различают систолическое (макси- 1 Для исследования капилляров тела человека в отраженном свете предна значен капилляроскоп М-70а. мальное) и диастолическое (минимальное) давление. Величина артериального давления у животных зависит от пола, возраста, породы, продуктивности, физиологического состояния (беременности, лактации, степени тренированности и пр.

Измерение кровяного давления у человека по Короткову. Метод основан на выслушивании звуковых эффектов, возникающих ниже места сдавливания плечевой артерии манжетой сфигмоманометра. Сфигмоманометр ртутный 025М (рис. 126) состоит из трех частей: полой резиновой манжеты 2, нагнетающего баллона 4 с винтовым клапаном и ртутного манометра 1. При работе все части герметически соединяются друг с другом '.

Этим создается разница давления в осциллометрической трубке, благодаря которой будут заметны пульсации различной силы в виде ритмичных синхронных колебаний величиной до 12 мм. Открыть зажим и постепенно выпускать из системы воздух так, чтобы уровень спирта сохранялся в первоначальном виде. Выпуекая воздух, следить одновременно за правым коленом ртутного манометра и осциллометра. При появлении колебаний спирта в ос-циллометре более 1 мм зарегистрировать величину показания манометра; она будет соответствовать максимальному кровяному давлению: При дальнейшем выпускании воздуха осцилляции усиливаются и достигают максимальной величины.

Усилие толкания регулируется пружиной. При правильной регулировке толкающий кулачок должен перескакивать через зуб и поворачивать колесо после пяти толкающих движений эксцентрика. Перед загрузкой зеленой массы в башню для лучшего ввода фрезы ванна засыпается зерном так, чтобы на 20— 30 см над уровнем пола вдоль всей ванны из зерна образовалась насыпь. Выгрузку материала следует начинать с укороченным плечом.

При небольшой производительности кормоцехов (до 1—2 т/ч) с применением химической обработки соломы (колхоз «Россия» Рязанской области, кормоцех Курган-сельхозтехпроекта и пр.) и его запаривания (кормоцех Челябинсксельхозтехпроекта, колхоз «Заветы Ильича», т. п. 801-323 и др.), а также с применением запаривания и дрожжевания кормов (кормоцех Липецксельхозпроекта и др.) используют смесители периодического принципа действия С-12, АПС-6, УС-00 и т.

Такие кормокухни эффективны на фермах до 200 коров. Под передвижные кормокухни можно использовать и. серийные кормораздатчики типа КУТ-3,0, КТУ-10. Об этом свидетельствует опыт колхоза имени Чапаева Шуми-хинского района Курганской области и др. В кормораздатчике КУТ-3,0 вместо шнекового транспортера следует установить скребковый от наклонной камеры комбайнов СК-3 или СК-4. К боковинам кормораздатчика приваривают пять труб, по которым подводится пар от котельной.

Пойло приготавливают следующим образом. В бак // заливают 2500 л воды и включают мешалку. Затем туда засыпают 400 кг концентрированных кормов, 100 кг рыбной пасты и 20 кг поваренной соли. Все компоненты смешивают 5—10 мин, после чего в бак по трубам подается пар. В период пропаривания пойла периодически включают мешалку. Общее время приготовления порции пойла 40— 50 мин. Готовое пойло фекальным насосом перекачивается в раздаточную емкость ВР-3, которая затем транспортируется трактором на ферму.

Себестоимость производства 1 т кормосмеси 3,01 руб., а пойла —0,43 руб. Обслуживают кормоцех 6 основных рабочих. Типовой проект кормоцеха № 801-323 разработан Укрнии-гипросельхозом. Кормоцех представляет собой одноэтажное здание, имеющее отделения для обработки, хранения и дозирования грубых и сочных кормов, кормосмесительную и т. д. Кормоцех предназначен для механизированного приготовления влажных кормовых смесей всем группам живот- пых молочнотоварной фермы на 800—1000 коров или при общем поголовье животных до 2000 голов.

, причем кормоцех КЦС-100/1000А унифицирован с КЦС-100/1000 и отличается наличием дополнительной линии "для запаривания картофеля (КН-3). Эффективность использования кормовых смесей может быть повышена за счет увеличения их влажности. По данным Полтавского НИИ свиноводства, животные, которым давали смеси влажностью 60%, имели привесы на 20% выше, нежели при кормлении сухими кормами (влажность 20%); при этом расход кормов был на 10% меньше.

оборудование кормоцеха должно надежно работать при температуре окружающей среды от +5 до +35° С и относительной влажности воздуха до 95%; оборудование кормоцеха в соответствии с назначением должно быть изготовлено из материалов, устойчивых к коррозии, воздействию кислот, щелочей и дезинфицирующих средств и не должно образовывать с ним вредных соединений; дозирующие устройства вспомогательных линий кормоцеха должны иметь регулируемую производительность, отклонения при дозировании компонентов допускаются в таких пределах: комбикормов и концентратов ± 1,5%, грубых и сочных кормов соответственно 10 и 3,5%, жидких питательных смесей 2,5%, минеральных добавок 1% от количества дозируемого по массе корма; время, необходимое для переключения всех дозирующих устройств кормоцеха на другой режим работы, должно быть не более 5 мин; показатель качества однородности смешивания кормосмеси должен быть не менее 75—80%, а при вводе карбамида — не менее 90 %; неравномерность смешивания грубых кормов, силоса и корнеклубнеплодов не должна превышать ± 15%, концентрированных кормов ± 5% от заданного рациона.

III-12) со шлейфом. Количество кормов, которое необходимо приготовить для разовой выдачи животным, определяется с учетом принятой кратности кормления. В данном случае на одно Для получения кормовой смеси заданной влажности по таблице II1-13 определяем влажность составленного рациона и добавляем в него расчетное количество раствора (воды). Расчетное количество раствора для молочных коров 11.