Включение и выключение контактов прерывателя осуществляется с помощью синхронного электромоторчика типа СД-2, имеющего постоянное число оборотов независимо от колебаний напряжения в сети. Нужный интервал прерывания тока производится нажатием соответствующей кнопки на панели прибора. Комбинированный прерыватель ОВЭК (рис. 52) имеет, .кроме того, 4 кнопки, позволяющие включать и выключать 4 электромаг- нитных отметчика, служащих для регистрации на кимографе работы внешних раздражителей (например, звонка, лампочки и т.

Так, пьезоэлектрический датчик можно подключить к одному из каналов двухканального чернильнопишущего электрокардиографа (см. стр. 195). Колебания потенциалов при этом подаются через гнездо панели на один из каскадов усилителя соответствующего канала. Это позволяет наряду с электрокардиограммой регистрировать на бумажной ленте другие показатели (пневмограмму, сердечные толчки и т. д.). С помощью предусилителей (например УБП-03) импульсы от генераторных датчиков могут быть зарегистрированы на шлейфном или катодном осциллографе и осциллоскопе.

Прибором такого рода является электронный измеритель давлений и регистратор механических перемещений ЭИД-1 (рис. 55)1. К прибору разработаны 3 типа емкостных датчиков разной чувствительности. Датчик / позволяет измерять давление в крови в пределах от 5 до 250 мм рт. ст., датчик // регистрирует изменения давления в диапазоне 1 — 150 мм вод. ст. (дыхательные движения, давление в полых органах, кровенаполнение и др.

Приборами аналогичного типа, но менее универсальными являются преобразователь давления медицинский ППМ-5 (для регистрации движений грудной клетки и мышечных движений с помощью1 датчиков перемещения) и преобразователь давления медицинский ПДМ-3 (для регистрации плетизмограмм, кривой артериального пульса, пневмограмм и других физиологических параметров). Оба прибора выдают регистрируемые показатели на электрокардиографах, выпускаемых объединением «Красногвардеец».

Пробирочки периодически менять, слюну сливать в цилиндр. Перечисленные раздражители по их влиянию на слюноотделение располагаются в следующем (убывающем) порядке: песок> >кислота>сухари>мясной порошок>хлеб>мясо (для околоушной железы); кислота>мясной порошок>песок>сухари>хлеб> >мясо (для слизистых желез). Околоушные слюнные железы жвачных в отличие от желез животных с однокамерным желудком продуцируют слюну непрерывно.

Отводные трубки присоединить к двум капсулам Марея для регистрации движения челюстей при жевании на правой и левой сторонах. Закрепить на лентопротяжном механизме отметчик времени. С интервалами 2—3 мин кормить животное сеном, овсом, комбикормом. Движения челюстей регистрировать на кимографе в течение одной минуты при поедании каждого корма. Подсчитать по кривым на кинограмме число жевательных движений и установить сторону жевания.

Ход операции. Кожу рассекают параллельно последнему ребру, отступив от него на 5—,6 см (у телят до 3—4-месячного возраста возможно ближе к ребру) и на 8—10 см ниже свободных концов поперечнореберных отростков поясничных позвонков. Подкожную мышцу, желтую брюшную фасцию и косую брюшную мышцу рассекают, а поперечную брюшную мышцу разъединяют тупым способом. Вскрыв брюшину, фиксируют ее края зажимами.

При двусторонней перерезке блуждающих нервов «мнимое кормление» секреции не вызывает. Таким образом, выделение желудочного сока при еде обусловлено комплексом безусловных (с полости рта) и натуральных условных (вид, запах пищи) раздражителей. Этот процесс называют сложнорефлекторной (первой) фазой желудочного сокоотделения, которая длится от 1,5 до 3 ч. Цель опыта: 1) познакомиться с классической павловской методикой получения желудочного сока у собаки, 2) проследить за сложнорефлекторной фазой желудочного сокоотделения.

П. Павловым получены классические кривые отделения сока на мясо, хлеб, молоко и другие пищевые раздражители. Цель опыта: 1) проследить за динамикой отделения сока из изолированного желудочка по Павлову при кормлении собаки, 2) сравнить кривые желудочного сокоотделения у собак с желудочками по Павлову и Гейденгайну, 3) проследить за влиянием гистамина на желудочную секрецию. Подготовка опыта. Собак с изолированными желудочками (одну по Павлову, другую — по Гейденгайну), не получавших корма в течение 18—20 ч, ставят в станок.

Ход опыта. В обычную пробирку внести 5 мл молочно-ацетатной смеси и добавить микропипеткой 0,1 мл желудочного сока собаки, свиньи или лошади (по секундомеру заметить время внесения смеси). Перемешать содержимое пробирки энергичными толчками, наблюдая одновременно за стекающим по стенкам молоком. Остановить секундомер в момент появления на стенках пробирки мелких хлопьев казеина. За единицу пепсина принимается то его количество, которое при указанных условиях створаживает 5 мл молочно-ацетатной смеси за 60 с1.

Ход опыта. Руминографом Горяиновой записать на протяжении всей длины ленты сокращения рубца коровы при спокойном состоянии животного (7—8 мин). Сменить ленту на барабане и снова записать руминограмму во время скармливания животному свеклы, травы или сена (учитывать колебания кривой," связанные с движениями животного). На руминограмме (рис. 73) обнаруживаются мелкие регулярные зубцыдыхательные движения и периодически повторяющиеся (через 20—30 с)'основные и дополнительные сокращения.

Через 1—2 мин после начала раздражения происходит отрыги-вание первой порции химуса. Обратить внимание на поведение животного в этот момент (попытку произвести вдох при закрытой гортани). Зарегистрировать движения челюстей животного на ленте кимографа, подсчитав число движений за один цикл пережевывания и установив величину интервалов между циклами. Проследить за.движением отрыгиваемой массы по пищеводу.

У интактных животных содержимое можно получить с помощью пищеводного или носоиищеводного (у бычков) зонда. При этом, однако, возникает вероятность получения жидкого содержимого из переднего Отдела рубца, не отражающего среднего состава химуса. Наличие большой фистулы рубца позволяет избежать отмеченного недостатка, так как дает возможность брать пробу из определенного участка методом черпания или получать среднюю пробу из разных отделов рубца и многократно.

Пробирка закрывается стеклянной пробкой 3 с бороздкой, позволяющей наглухо перекрывать пробирку или соединять ее с патрубком. Ход опыта. Полученное содержимое рубца отфильтровать через 4 слоя марли. Укрепить бродйметр в зажиме штатива. Открыв пробку, залить в бродйметр смесь из 8 мл содержимого рубца и 2 мл 5%-ного раствора сахарозы или глюкозы. Закрыть пробку и поставить ее в положение, обеспечивающее сообщение пробирки с патрубком.

Добавлять дистиллированную воду, пока раствор не приобретет аметистового цвета. Сверху в пробирку вносить по каплям фильтрат рубцового содержимого. При наличии молочной кислоты наблюдать появление «дорожек» лимонно-желтого цвета. Летучие жирные кислоты. 1. В пробирку налить 5—7 мл фильтрата рубцового содержимого и нагревать на пламени горелки. Над пробиркой, не касаясь ее, держать синюю лакмусовую бумажку.

Роль инфузорий в преджелудках полностью не выяснена. По-видимому, она заключается в перемешивании и разрыхлении содержимого рубца, разрушении грубой растительной оболочки корма, синтезе гликогена и полноценного животного белка, соответственно из продуктов расщепления клетчатки и растительных белков. Некоторые виды инфузорий способны переваривать клетчатку и синтезировать витамины группы В. Цель опыта: 1) ознакомиться в препарате «висячей капли» с разновидностями Рубцовых инфузорий, их размерами и характером движения, 2) произвести подсчет количества инфузории в 1 мл рубцовой жидкости.

Извлечь содержимое рубца и измерить те же показатели. Процедура сопровождается уменьшением частоты и глубины дыхания; температура кожи и ректальная температура изменяются мало. Ввести в рубец резиновый пузырь, заполнить его водой температуры 10—15°С и через 15—20 мин исследовать перечисленные выше показатели. Частота дыхания и пульса снижаются, температура падает (потребление кислорода при этом возрастает).

112). Розовая окраска будет говорить о частичном переваривании белка (наличие пептидов), фиолетовая — о наличии белка. С содержимым пробирки № 4 проделать реакцию на аминокислоты с бромной водой (добавить 1 мл амилового спирта и по каплям бромную воду). В присутствии триптофана, при встряхивании, слой амилового спирта окрашивается в красно-фиолетовый цвет. Примечание. Вместо фибрина можно взять кусочки экспонированной и отмытой кинопленки (субстат для переваривания — желатин).

Фистульную трубку двенадцатиперстной кишки закрывают пробкой, к трубке, вставленной в изолированный мешочек, прикрепляют колбочку. Приборы и реактивы: штатив с пробирками, воронки, пипетки, бумажные фильтры, растительное масло, серный цвет, 20%-ный раствор сахарозы, серная кислота концентрированная, смесь азотной и азотистой кислот, 0,3%-ный раствор соляной кислоты. Получение желчи. Ход опыта. Собирать отделяющуюся желчь в течение 30 мин (у годовалого теленка за это время выделяется 30—40 мл).

Движение кишечника происходит в результате координированных сокращений продольных и поперечных мышечных волокон. Благодаря моторной функции кишечника осуществляется продвижение пищевых масс вдоль кишечного канала и их перемешивание. В тонком кишечнике сельскохозяйственных животных различают 3 типа сокращений: перистальтические (быстрые и медленные), ритмические и тонические. Каждый отдел кишечника характеризуется определенными особенностями моторики, которые заключаются в превалировании тех или иных видов сокращений.

Приборы и реактивы: стеклянный стакан, универсальный штатив с рычажком, кимограф, термометр, нитки, грузик, раствор адреналина Г: 1000, раствор ацетилхолина 1 : 100 000. Ход опыта. Отрезок кишки фиксировать одним концом с помощью петли к стеклянному крючку с капилляром внутри. Через другой конец кишки пропустить лигатуру, которую соединить с пишущим рычажком. Если рычажок легок и кишка не растягивается, подвесить к рычажку грузик.

Прибавить в раствор Рингера 5 капель ацетилхолина. Сокращения кишки усиливаются, приобретая тонический характер. Кривая записи идет резко вверх. Остановить кимограф. Отсосать раствор спринцовкой или выпустить его через кран и налить в стакан свежий раствор. Снова записать фон моторной деятельности в течение 5—10 мин. Добавить к раствору 10 капель адреналина. Сокращения уменьшаются и даже прекращаются, но затем возникают снова с постепенно возрастающей амплитудой (двухфазный характер действия адреналина).

Процессы всасывания регулируются нервной системой и гуморальным путем. Всасывание можно изучать в хронических опытах на фистульных животных, в острых опытах и на изолированных отрезках кишечника. Исследование всасывания аминокислот в хроническом опыте1. Цель опыта: исследовать всасывание меченой аминокислоты 35S-Me-тионина в изолированной кишечной петле у овцы. Подготовка опыта. Овцу с фистулой кишечника по Тири—Павлову (см.

опыт 40). У овец можно производить, кроме того, пункцию кожной вены, расположенной под внутренним углом глаза. Для получения больших количеств крови, а также для внутривенных вливаний производят пункцию яремной вены на границе верхней и средней трети шеи. После фиксации животного большим пальцем левой руки сдавливают вену ниже места пункции (у крупного и мелкого рогатого скота накладывают резиновый жгут), а затем прокалывают кровопускательной или инфузионной иглой кожу и стенку вены.

Здесь проходит ствол хвостовой артерии. Легким вращением пипетки перерезают артерию, и кровь поступает в пипетку (рис. 88). Можно брать кровь у рыб из сердца. Инъекционную иглу вводят по сагиттальной линии между грудными плавниками с легким наклоном в сторону головы. При получении крови у рыб их завертывают в полотенце или фиксируют в специальном станочке. Для удаления слизи, содержащей большое количество тромбокиназы, кожу в месте пункции протирают 70%-ным спиртом и просушивают тампоном.

Схема, иллюстрирующая соотношение составных частей крови, изображена на рис. 89. Если выделить из крови фибриноген механическим путем, то такая кровь теряет способность к свертыванию. Она содержит все составные части, за исключением белка фибриногена, и называется дефибринированной кровью. Цель опыта: 1) изучить соотношение и взаимосвязь составных частей крови, 2) получить плазму, сыворотку, дефиб-ринированную кровь и фибрин.

Цель опыта. Исследовать некоторые показатели, характеризующие физико-химигчеокие свойства крови,— плотность и вязкость. Подготовка опыта. В опыте используются стабилизированная цитратом натрия или гепарином кровь лошади или рогатого скота. Для работы подготовить штатив, вискозиметр, стеклянные стаканчики, пробирки, часовые стекла, дистиллированную воду, растворы медного купороса разной плотности.

92). Примечание. Полученные показатели можно проверить в демонстрационном опыте, определив плотность крови по Гаммершлагу. Для этого в стеклянном цилиндре готовят смесь бензола (50 частей) и хлороформа (20 частей). Плотность, измеренная ареометром, должна составлять 1,050—1,060. Опуская каплю крови пипеткой в смесь и добавляя бензол, (если капля всплывает) или хлороформ (если капля тонет), установить плотность смеси, равную плотности крови.

Цифра, до которой дойдет за этот период столбик воды, является относительным показателем вязкости крови. У млекопитающих и птиц он составляет 4—5, у рыб 1,7—1,8 (кровь рыб более жидкая). Можно вычислить истинную величину вязкости крови, если полученный относительный показатель умножить на истинную вязкость воды, выраженную в пуазах (0,01 при 20° С). Кровь животных имеет слабощелочную реакцию, ее рН колеблется в пределах 7,35—7,50 (при нанесении капли крови на красную лакмусовую бумажку последняя синеет).

Ход опыта. В стаканчик налить 15 мл дистиллированной воды, добавить 2 капли фенолфта леина и 2 капли из бюретки 0,1 н. раствора едкого натра. Появляется неисчезающее слабо-фиолетовое окрашивание. В другой стаканчик налить 15 мл воды, добавить 1 мл сыворотки, 2 капли фенолфталеина и титровать 0,1 н. раствором едкого натра до того же окрашивания, что и в первом стаканчике, считая количество капель щелочи.

Цель опыта. Определить щелочной резерв (общую кислотную емкость) крови по Неводову. Подготовка опыта. Кровь необходимо получить от животного непосредственно в момент анализа. Для анализа подготовить ' бюретку на 20 мл, химические стаканчики, микропицетки, индикатор — фенолфталеин, соляную кислоту 0,01 н. раствор, едкий натр 0,01 Нг раствор. Ход опыта. В химический стаканчик налить 10 мл 0,01 н. раствора соляной кислоты.

Эритроциты подсчитывают в 5 больших квадратах (80 маленьких) по диагонали (рис. 94, Б, заштрихованные квадраты) или по углам сетки и посередине ее. Считают клетки, находящиеся внутри квадрата, а также на верхней и левой пограничных линиях (рис. 95). Вычисление количества форменных элементов производят по следующей формуле: где х — количество клеток в 1 мм3 крови, а — количество подсчитанных клеток, в — разведение, б — количество малых квадратов, в которых произведен подсчет.

Наиболее распространенными приборами такого типа являются счетчики Коултера (США, Франция, Англия) разных моделей, приборы «Целлоскоп-302» и «Целлоскоп-401» (Швеция), счетчики ЦГ-2 (ГДР), приборы «Пикоскел» (Венгрия). В СССР производятся аналогичные приборы СФЭК-62, ИКМ-2 (рис. 98, 99) и др. 1 При определении числа эритроцитов измерения ведутся в инфракрасной области спектра, при определении гемоглобина — в синей.

Ход опыта. Стакан с подготовленной пробой для подсчета эритроцитов поместить в прибор и проделать основные рабочие операции: открыть управляющий кран, произвести сброс счетчика на нуль, закрыть управляющий кран (в некоторых моделях счетчиков необходима лишь одна операция — нажать кнопку или повернуть ручку). Повторить процедуру подсчета и взять средние данные из ряда подсчетов. Подставить к показаниям счетчика указанное в инструкции количество нулей, определить содержание эритроцитов в 1 мм3 цельной крови.

Подготовить иглы для взятия крови, предметные стекла обезжиренные, аппарат Безарона, водяную баню, пробирки центрифужные, спирт, вату, йод. Аппарат Безарона состоит из двух металлических камер — воздушной и водяной, с термометрами. На металлической рамке внутри воздушной камеры установлено вогнутое стекло, покрытое парафином. Стекло поворачивается с помощью винта, водяная камера подогревается горелкой.

Вначале .кровь свободно стекает по стенке пробирки. Заметить по секундомеру момент, когда кровь перестанет стекать.и в пробирке образуется сгусток (метод Ли и Уайта). 3. Протереть смотровое стекло аппарата Безарона, смочить водой марлевый мешочек, на дно воздушной камеры налить 15 мл теплой воды. Водяную камеру аппарата заполнить на 3/4 объема водой. Закрыть аппарат крышкой. Нагреть воду в водяной бане, так чтобы температура воздуха в воздушной камере составляла 37°.

При переливании следует учитывать свойства сыворотки реципиента и эритроцитов донора. Сыворотка донора во внимание не принимается, так как, поступая в кровяное русло реципиента, она теряет свои агглютинирующие свойства. Схема совместимости разных групп крови приведена на рис. 106 (кровь можно переливать только в направлении стрелок). Цель опыта: ознакомиться с методикой определения групп крови у человека и определить свою группу.

С помощью фонендоскопа, приложенного к поверхности грудной клетки в области 4—5-го межреберных промежутков слева, выслушать сердечные тоны, которые при сравнительно редкой сердечной деятельности у крупных животных легко различаются друг от друга. Повторить исследование тонов сердца после небольшой работы (проводки, прогонки животного). При аускультации определить силу и ясность тонов, частоту и ритм, наличие или отсутствие посторонних шумов.

Это возможно при использовании электрорадиофицированного стенда, имитирующего функцию кровообращения (стр. 38). Запись сердечных тонов см. работу 60. Сердце лягушки — трехкамерное, состоит из двух предсердий и одного желудочка (см. рис. 113). В правое предсердие впадают две полые вены, образующие в устье расширение, называемое венозным синусом; в левое предсердие впадают легочные вены. В правое предсердие поступает смешанная кровь (от головы, передних конечностей и заднего конца тела — венозная; от кожи — артериальная), а в левое предсердие —артериальная (из легких).

Собрав все лигатуры в одной руке, отделить сердце от окружающих тканей. Обрезать коротко лигатуры, поместить сердце в стеклянную чашечку с поплавком, наполненную раствором Рингера. При правильной изоляции сердце продолжает сокращаться, что свидетельствует о его автоматии. Опустить чашечку в сосуд с водой температуры 18—20° С и сосчитать число сокращений сердца в 1 мин. Помещая в сосуд кусочки льда и снижая температуру до 5—10° С, убедиться, что частота сокращений .

Поэтому электрокардиография широко применяется в клинической практике и научно-исследовательской работе для контроля за функциональным состоянием сердца и диагностики его заболеваний. При возникновении разности потенциалов между возбужденными и невозбужденными участками сердца электрические силовые линии распространяются по всему телу, что позволяет регистрировать кривые колебаний потенциалов путем приложения электродов к определенным точкам тела.

118), ВЭКС-4М или осциллоскопа 074 продемонстрировать студентам ЭКГ н"а экране электроннолучевой трубки. Стандартные отведения получаются при установке переключателя ВЭКС на 1 отведение2. . 3. При наличии фоноэлектрокардиографа ФЭКП-2, фонокардиографической приставки ФКП-2 или «Фонокард НФ» к электрокардиографу ЭКПСЧ записать одновременно на первом канале прибора электрокардиограмму, а на втором — фонокардиограмму (порядок подключения приставки к электрокардиографу указан в инструкции).

Аппарат обеспечивает круговое движение крови и возможность регулирования- величины притока и оттока питающей жидкости. Цель опыта: 1) ознакомиться с методикой приготовления препарата изолированного сердца лягушки, 2) исследовать причины изменения минутного объема крови, выбрасываемого желудочком. Подготовка опыта. Опыт следует проводить на крупных лягушках. Для работы готовят аппарат Якоби, препаровальный набор, стеклянные канюли Штрауба диаметром 0,5 см, шприц на 2,0 или 5,0 мл с иглой, нитки, раствор Рингера.

Отмыть сердце раствором Рингера, восстановить его деятельность и добавить к раствору Рингера 3—4 капли 1%-ного раствора КС1. Сокращения сердца ослабляются и оно останавливается в фазе диастолы. Быстро промыть сердце раствором Рингера, добившись восстановления его работы. Аналогичным образом записать эффект от введения в раствор норадреналина (1 : 1000, 2—3 капли) и ацетил-холина (1 : 10 000, 1—2 капли).

2. Кран 7 модели Б поставить в открытое положение, кран 2 перекрыть, кран / поставить в среднее положение. Ритмично выбрасывая жидкость баллончиком 4, наблюдать за вытеканием ее из суженного отверстия системы. Благодаря компрессионной камере ритмическое поступление жидкости (при достаточном периферическом сопротивлении) превращается в непрерывный ток. Уменьшить сопротивление с помощью крана 1. Жидкость вытекает прерывисто.

Лучшим местом для определения артериального давления у взрослого крупного рогатого скота и лошадей является хвостовая артерия (a. coccygea), у телят до 1 года и у овец — срединная артерия (a. mediana), у свиней и собак — артерия сафена (a. sap-hena).. Флебоосциллометр Шарабрина И. Г. (рис. 128) представляет собой прибор, детали которого смонтированы на двух сторонах деревянного футляра. На лицевой стороне находятся две манометрические трубки: одна — с водой (для измерения венозного давления), другая — с ртутью (для измерения артериального давления).

Манжета фиксируется на плече или бедре с помощью металлического зажима. Ниже описана техника измерения давления у крупного рогатого скота. Ход опыта. Зафиксировать лошадь в станке (телят удерживать за недоуздок) и наложить манжету на корень хвоста, в области 6—7-го хвостовых позвонков (телятам — на переднюю конечность, ближе к локтевому суставу). Фиксировать манжету двумя ремешками так, чтобы она не спадала и не сдавливала артерию.

Подготовка опыта. Опыт проводят на кролике-альбиносе с большими ушами. Готовят осветитель для микроскопа, стеклянную банку для воды, простыню, лед, вату, воду, подогретую до 50° С, ксилол, булавки. Ход опыта. Кролика завернуть в полотенце (простынь), оставив снаружи голову и правую переднюю лапу. Поддерживая уши за кончики, осветить их ярким источником света и наблюдать за состоянием кровеносных сосудов.

Koran А. Б., Щитов С. И. «Техника физиологического экспериумента». М., 1967, с. 460. писчик, 5 —трубка к бутыли с водой или к крану; Б — плетизмограмма (стрелкой отмечен момент погружения другой руки в теплую воду) водой (рис. 131,5). Плетизмограмма считается удовлетворительной, если на ней отражены мелкие пульсовые колебания. При отсутствии последних необходимо проверить герметичность системы или повысить чувствительность капсулы.

Выступающие отростки отводной трубки / и трубки, вставленной в полость сосуда 2, соединить через тройник с ртутными манометрами 5, 6. Снять зажимы 3,4 с тройников (легкие находятся в спавшемся состоянии). Определить эластическую тягу легких. Для этого ветвь тройника 4 соединить со шприцем на 20—50 мл, зажим тройника 3 снять. Вводя в легкие по 10—20 мл воздуха, отмечать каждый раз показание манометра 5.